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Metodo LAMP: un'alternativa semplice, veloce ed economica alla PCR?

Con sensibilità e specificità paragonabili alla PCR, il metodo LAMP può essere eseguito sul campo per ottenere risultati con un'attesa minima...

I test basati sulla rilevazione degli acidi nucleici sono diventati il ​​test di scelta per rilevare la presenza di agenti patogeni nei campioni diagnostici. La reazione a catena della polimerasi o PCR è una procedura di analisi degli acidi nucleici ampiamente utilizzata nei laboratori diagnostici e di ricerca. La PCR è una procedura che amplifica un minuscolo frammento di DNA fino al punto in cui è rilevabile come banda su una striscia di gel o come segnale fluorescente rilevabile dalla macchina e può essere eseguita in poche ore. Per eseguire una buona PCR è necessario un investimento significativo in attrezzature, come termo-ciclatori ( thermocyclers), un laboratorio specializzato e personale formato ed esperto.

Cos'é il metodo LAMP?

Il metodo LAMP (in inglese, Loop-mediated isothermal amplification) è un metodo semplice, veloce, sensibile ed accurato di rilevamento e amplificazione del DNA/RNA che non richiede apparecchiature sofisticate ed è relativamente poco costoso. La reazione viene condotta in una provetta per microcentrifuga. L'attrezzatura necessaria per il metodo LAMP è semplice: una pipetta, puntali monouso e un bagno a secco digitale. Un bagnomaria o una comune incubatrice, o anche un thermos con acqua calda, possono essere sufficienti come fonte di calore, ma per facilitare l'igiene del laboratorio è altamente consigliato un termoblocco digitale (Figura 1).

Figura 1. Baño seco digital para tubos de microcentrífuga - apto para LAMP. Fuente: Thermo Fisher Scientific Inc.

Figura 1. Baño seco digital para tubos de microcentrífuga - apto para LAMP. Fuente: Thermo Fisher Scientific Inc.

In una tipica applicazione LAMP, la miscela in provetta conterrà:

  • Sei frammenti di DNA chiamati primers che coincidono con la sequenza di DNA che si va a rilevare.
  • Enzima specifico della polimerasi (ad esempio, BST DNA polimerasi)
  • Buffers
  • Reagenti di supporto
  • Un colorante indicatore (indicatore di pH o colorazione diretta del DNA)
  • Trascrittasi inversa per virus a RNA
  • Il campione da analizzare.

Questa miscela viene incubata a 60-65°C per 30 minuti. Se nel campione è presente del DNA che corrisponde ai primer, si formano una serie di anse di DNA. I loop diventano più complessi e numerosi con il progredire della reazione di amplificazione (Figura 2).

Figura 2. Formazione di loop di DNA nella reazione della polimerasi nel metodo LAMP. Fonte: Alhassan et al. 2015.
Figura 2. Formazione di loop di DNA nella reazione della polimerasi nel metodo LAMP. Fonte: Alhassan et al. 2015.

L'amplificazione della polimerasi come sottoprodotto produce pirofosfato di magnesio che provoca torbidità (opacità) nel tubo. I marcatori colorati che si legano direttamente al DNA danno un segnale fluorescente nello spettro visibile o UV. Un sistema LAMP che utilizza un indicatore di pH rosso fenolo passa dal rosso rosato al giallo.

La Figura 3 mostra il risultato di un test LAMP per la peste suina africana (PSA) - La provetta A conteneva estratto dalla milza di una scrofa morta di PSA. L'alto contenuto di DNA virale genera un colore giallo opaco. La provetta B era un tampone di fluido orale della stessa scrofa, con la carica virale più bassa attesa. Osservando la linea di base è evidente la torbidità nelle provette A e B. Le provette da C a F sono sospette e negative.

Figura 3. Provette per microcentrifuga da un test in situ del metodo LAMP in un caso di PSA. A: milza di scrofa morta, B: fluidi orali della stessa scrofa (A), C-F: fluidi orali sospetti e negativi.
Figura 3. Provette per microcentrifuga da un test in situ del metodo LAMP in un caso di PSA. A: milza di scrofa morta, B: fluidi orali della stessa scrofa (A), C-F: fluidi orali sospetti e negativi.

Esistono alcune variazioni della reazione LAMP a seconda della tecnologia disponibile. Il test può essere applicato in micropiastre sigillate a 96 pozzetti con coloranti colorimetrici o fluorescenti o misurazioni della torbidità per un risultato quantitativo automatizzato. Le fotocellule filtrate nel blocco termico e un LED adatto potrebbero anche automatizzare la lettura fluorescente semiquantitativa in tempo reale dei tubi per microcentrifuga. La spettrofotometria con la fotocamera del cellulare potrebbe risolvere i dubbi sui tubi sospetti in quei casi in cui l'occhio umano non riesce a risolvere il dubbio.

La reazione LAMP può essere eseguita sul campo, in situ, per comodi risultati "Point-of-Care" con un'attesa minima. Il nostro laboratorio ha costruito e verificato test LAMP economici (da "zero" e da kit) per peste suina classica (PSC), circovirus suino 2 (PCV2) e peste suina africana (come sopra). Volevamo convalidare l'idea (per PSC) che un lotto di riproduttori potesse essere testato economicamente prima dell'introduzione per l'infezione persistente utilizzando il metodo LAMP.

I vantaggi del metodo LAMP sono la rapidità dei risultati, la formazione minima richiesta, il basso investimento in attrezzature, lo spazio ridotto che occupa in laboratorio e il basso costo complessivo per campione. Sebbene i costi possano variare, il costo del metodo LAMP è circa la metà del costo della PCR ed è ulteriormente ridotto per matrici semplici in cui non è necessaria una precedente estrazione dell'acido nucleico. I laboratori che vogliono investire nello sviluppo del metodo LAMP da zero con reagenti relativamente poco costosi e set di primer propri possono evitare il costo più elevato di un kit pronto all'uso, ma devono sostenere i costi associati allo sviluppo, alla verifica e alla certificazione.

La sensibilità e la specificità del metodo LAMP è paragonabile a quella della PCR e può dare risultati in 30 minuti. Alcune amministrazioni hanno approvato kit di test LAMP commerciali per PSA e Covid-19.

Tra gli svantaggi del metodo LAMP include la mancanza di conoscenza da parte di alcuni accademici e ricercatori e un certo scetticismo sul metodo. LAMP richiede 6 (fino a 8) primer per ogni gene da rilevare e la generazione di primer è più difficile della PCR convenzionale, ma ci sono strumenti online. Per virus a RNA altamente mutabili come la PRRS, possono essere necessari più set di primer nella miscela, ma ciò non ne ha impedito l'uso. Il metodo LAMP genera molto DNA e generalmente le provette positive non devono essere aperte dopo il test per evitare la contaminazione del laboratorio. Gli ampliconi LAMP non sono facilmente sequenziabili e il laboratorio potrebbe dover ricorrere alla PCR convenzionale o ad altri metodi per i campioni LAMP-positivi quando è richiesto il sequenziamento del virus.

È facile immaginare l'applicazione del metodo LAMP negli allevamenti zootecnici, nelle raccolte animali e nei macelli, così come negli ambienti più rudimentali e remoti dove non è possibile spostare attrezzature sensibili e costose. Quando non sono disponibili strutture sofisticate o persino elettricità e le risposte binarie sì/no sono un must per il processo decisionale in tempo reale e sul campo, il metodo LAMP potrebbe fornire una soluzione. A causa del basso costo e della mancanza di attrezzature, potrebbe aver ostacolato in una certa misura la proliferazione di LAMP, poiché alcune aziende e laboratori universitari potrebbero preferire strutture più costose, dando maggiore importanza al ritorno marginale dell'investimento rispetto al costo reale delle attrezzature, servizi di analisi veterinarie a pagamento.

Mentre il mondo si muove verso il controllo e l'eradicazione delle principali malattie endemiche transfrontaliere come la peste suina africana (PSA), la sindrome respiratoria suina (PRRS) e la peste suina classica (PSC), la disponibilità di un test rapido, comodo e conveniente ha un grande potenziale per l'uso.

"Forse essere troppo pratici è da pazzi” - Miguel de Cervantes Saavedra (1547-1616), Don Chisciotte.

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FAQs

A cosa serve il metodo LAMP nei suini?

LAMP (amplificazione isotermica mediata da loop) è un metodo semplice, rapido, sensibile e accurato per il rilevamento e l'amplificazione del DNA/RNA che non richiede apparecchiature sofisticate ed è relativamente economico. I test basati sulla rilevazione degli acidi nucleici sono diventati il ​​test di scelta per rilevare la presenza di agenti patogeni nei campioni per la diagnosi di laboratorio nei suini. Attualmente la PCR è la procedura analitica più utilizzata.

Quali vantaggi offre il metodo LAMP nelle analisi di laboratorio sui suini?

La velocità dei risultati, la formazione minima richiesta, il basso investimento in attrezzature, il piccolo spazio che occupa in laboratorio e il basso costo complessivo per campione. La sensibilità e la specificità del metodo LAMP (amplificazione isotermica mediata da loop) è paragonabile a quella della PCR e può fornire risultati in 30 minuti.

Quali svantaggi presenta il metodo LAMP nelle analisi di laboratorio sui suini?

LAMP (amplificazione isotermica mediata da loop) richiede 6 (fino a 8) primer per ciascun gene da rilevare e la generazione di primer è più difficile rispetto alla PCR convenzionale, ma esistono strumenti online. Inoltre, il laboratorio potrebbe dover ricorrere alla PCR convenzionale o ad altri metodi per i campioni LAMP-positivi quando è richiesta la sequenza del virus.

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